引言

二氢蝶酰九谷氨酸还原酶（Dihydrofolate Reductase-Thymidylate Synthase, DHFR-TS）是叶酸代谢途径中的关键酶之一，参与DNA合成与细胞分裂的调控。其在肿瘤、感染性疾病及抗生素耐药性研究中的重要性日益凸显。通过检测DHFR-TS的活性或表达水平，可为疾病诊断、治疗监测及药物开发提供重要依据。本文系统介绍DHFR-TS检测的范围、项目、方法及仪器，旨在为临床和科研实践提供技术参考。

检测范围

DHFR-TS检测的应用领域广泛，主要涵盖以下场景：

• 临床诊断：用于评估肿瘤患者对甲氨蝶呤（MTX）类药物的耐药性，或检测寄生虫感染（如疟原虫）中的酶活性变化；
• 药物研发：在抗肿瘤、抗微生物药物筛选中，评价候选化合物对DHFR-TS的抑制效果；
• 基础研究：解析叶酸代谢通路的分子机制及酶动力学特性；
• 环境监测：评估环境中抗叶酸类污染物对生物体的潜在影响。

检测项目

DHFR-TS检测的核心指标包括：

• 酶活性测定（单位时间内底物转化量）；
• 酶蛋白表达水平（通过浓度定量或相对表达量分析）；
• 酶动力学参数（如Km、Vmax等）；
• 基因突变分析（与耐药性相关的特定位点变异检测）。

检测方法

根据检测目标和样本类型，主要采用以下方法：

1. 分光光度法

通过监测酶促反应中NADPH在340 nm处的吸光度变化，计算单位时间内底物消耗量。该方法灵敏度高，适用于纯化酶液或细胞裂解液的活性分析，但需排除样本中内源性NADPH的干扰。

2. 荧光分析法

利用荧光探针（如dihydrofolate类似物）与酶结合后的荧光强度变化进行定量，检测限可达nmol/L级，尤其适合低丰度样本或高通量筛选。

3. 酶联免疫吸附试验（ELISA）

采用特异性抗体对DHFR-TS蛋白进行双抗体夹心法检测，可区分酶的不同亚型，适用于组织匀浆或血清样本的浓度测定。

4. 分子生物学方法

包括qRT-PCR（检测mRNA表达水平）及基因测序（鉴定耐药突变位点），需配合引物设计和生物信息学分析。

检测仪器

不同检测方法需配置专用设备：

• 紫外-可见分光光度计：用于分光光度法，要求波长精度≤±1 nm；
• 荧光酶标仪：支持多通道检测，配备激发/发射滤光片（如Ex 340 nm/Em 460 nm）；
• 全自动酶标仪：集成温控和震荡功能，适用于ELISA高通量检测；
• 实时荧光定量PCR仪：用于基因表达分析，需具备熔解曲线分析模块；
• 液相色谱（HPLC）：可选配用于验证酶反应产物的特异性。

技术挑战与质控要点

DHFR-TS检测需注意以下关键问题：

• 样本制备中需添加蛋白酶抑制剂，防止酶降解；
• 分光光度法需设置空白对照，校正内源性物质干扰；
• 荧光法应定期校准荧光强度与酶活性的标准曲线；
• 基因检测需设计特异性引物，避免同源基因交叉反应。

结论

DHFR-TS检测技术的精准化与多元化，显著推动了其在精准医疗和新药研发中的应用。未来随着单分子检测技术和人工智能数据分析的发展，有望实现更的酶活性动态监测与个性化用药指导。临床实验室需根据实际需求选择适配方法，并通过严格质控确保检测结果的可靠性。

了解中析

实验室仪器

合作客户